Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов.
Обновлено: 24.04.2024
Введение
Биопсия сигнального лимфатического узла (СЛУ) при раке молочной железы (РМЖ) с cN0 является стандартной операцией в странах с развитой медициной и интенсивно осваиваемой онкологами Российской Федерации. Безопасность биопсии СЛУ была доказана в рандомизированных исследованиях, ставших фундаментальными для этого раздела онкомаммологии [7, 20, 21, 25, 15] , а также в метаанализе рандомизированных исследований [18] . Ограничение объёма вмешательства на подмышечных лимфатических узлах биопсией СЛУ узла привело к резкому снижению частоты осложнений, связанных с подмышечной лимфаденэктомией и, прежде всего, частоты лимфостаза верхней конечности [22] .
К новым технологиям поиска СЛУ относится технология флуоресцентной лимфографии с использованием зелёного индоцианина. Зелёный индоцианин обладает способностью к флуоресценции. Пик поглощаемого излучения имеет длину волны около 780 нм, испускаемое излучение (в инфракрасном спектре) имеет длину волны около 830 нм. Флуоресценция проникает через ткани толщиной не более 10 мм. Флуоресцентная лимфография не уступает радионуклидной технологии по частоте нахождения СЛУ (94-100%), однако адекватность первой почти не оценена по показателю частоты ложноотрицательных заключений [5,12,14,23,24] .
Материалы и методы
Было оперировано 99 больных со 100 случаями рака молочной железы cT1-4N0M0 (T1 — 43, T2 — 55, T3 — 1, T4 — 1). Во всех случаях диагноз инфильтративного рака был подтверждён гистологически. 12 больных получали предоперационную химиотерапию, 8 — предоперационную гормонотерапию. Подмышечный этап операции состоял из биопсии СЛУ с использованием флуоресцентной лимфографии и лимфаденэктомии I–II или I—II—III уровней.
Прибор Photodynamic Eye C9830 (Hamamatsu Photonics K.K) использовался для генерации возбуждающего инфракрасного излучения и регистрации ответной флуоресценции. Флуоресцентное изображение передавалось на экран компьютера. Биопсия СЛУ производилась под наркозом как первый этап операции. Зелёный индоцианин в виде водного раствора (5 мг/мл) в объёме 2 мл вводился внутрикожно и подкожно по наружному краю ареолы молочной железы или над опухолью (рисунок 1).
Рисунок 1. Ведение индоцианина зелёного (0 мин.)
Через 2-5 минут можно было видеть флуоресцентное изображение лимфатического пути, идущего к подмышечной области (рисунок 2). Изображение на экране компьютера было видно в режиме реального времени, что позволяло зарисовывать на коже пациентки изображение лимфатического протока. Изображение лимфатического узла через не рассечённые ткани удавалось увидеть менее, чем в 10%.
Рисунок 2. Получение изображения доминирующего пути лимфооттока (3 мин.)
Место «обрыва» лимфатического протока, видимого сквозь кожу, являлось ориентиром для поиска сигнального лимфатического узла в глубине тканей подмышечной области. Для этого было необходимо рассечение, как минимум, кожи, подкожной клетчатки и поверхностной фасции (рисунок 3). Технической ошибкой, допущенной дважды, являлась попытка проследить ход флуоресцирующего лимфатического протока в ране. Повреждение протока приводило к излиянию зелёного индоцианина из протока в рану и беспорядочному прокрашиванию тканей. Флуоресцирующий участок тканей в таких случаях был ошибочно принят за СЛУ, и при гистологическом исследовании в этих 2 случаях лимфатический узел не был обнаружен. Для исключения подобной ошибки, нужно было представить локализацию лимфатического узла, в который впадает лимфатический проток, и оперативный доступ к этому СЛУ осуществлять со стороны противоположной впадению лимфатического протока в СЛУ.
Рисунок 3. Флуоресцирующий узел в ране (6 мин.)
После удаления СЛУ контролировалась его флуоресценция (рисунок 4), в ране контролировалось наличие или отсутствие дополнительных лимфатических узлов как с помощью поиска флуоресценции, так и пальпаторно. И флуоресцирующие и пальпируемые лимфатические узлы расценивались как сигнальные и отправлялись на срочное гистологическое исследование по замороженным срезам с окраской гематоксилином и эозином. На собственно биопсию СЛУ уходило 15-30 минут и ещё такое же время на гистологическое исследование.
Рисунок 4. Флуоресцирующий узел на препарате (14 мин.)
Результаты
Флуоресцирующий через кожу лимфатический проток был виден во всех 100 случаях, а флуоресцирующий лимфатический узел, — менее, чем в 10%. Обычно последний становился виден в ране после рассечения кожи, подкожной клетчатки, поверхностной и собственной фасций. СЛУ был найден в 98 случаях (98 %). Среднее количество лимфатических узлов, удалённых как сигнальные, = 1,9±0,1 (1-7 узлов). Среднее количество лимфатических узлов, удалённых при лимфаденэктомии, = 10,5±0,5 (5-26 узлов). В 28 случаях из 98 (28,6%) были обнаружены метастазы в лимфатических узлах. У больных с N+ метастатическое поражение других лимфатических узлов кроме сигнальных присутствовало только в 35,7%. По данным интраоперационного гистологического исследования ложноотрицательный результат наблюдался в 3 случаях из 28, по данным планового гистологического исследования — в 1 случае из 28 (3,6%). Чувствительность составила 96,4%, специфичность — 100%, точность — 99,0% (97 правильных заключений из 98). Не наблюдалось аллергических реакций или других побочных эффектов и осложнений при введении индоцианина зелёного.
Gould E.A. et al. были первыми, кто обосновал и применил на практике хирургическую тактику биопсии СЛУ. У больных раком околоушной слюнной железы лимфатический узел, находящийся в месте слияния передней и задней лицевых вен, по наблюдению авторов являлся сигнальным. Приводятся сведения о 9 больных, оперированных в 1951-1957 гг. СЛУ удалялся и исследовался интраоперационно гистологически. При нахождении в нём метастаза, производилась радикальная шейная диссекция, если СЛУ не был поражён, диссекция не выполнялась. Четверо больных, которым радикальная шейная диссекция не выполнялась, были прослежены от 2 до 8 лет без признаков рецидива [11] . Нахождение и морфологическая оценка состояния СЛУ, — лимфатического узла, первым воспринимающим лимфу от поражённого злокачественной опухолью органа, позволяют оценить вероятность метастатического поражения других лимфатических узлов. В случае отсутствия такого поражения, — с высокой степенью достоверности предвидеть отсутствие метастазов в последующих лимфатических узлах и отказаться от их удаления без ущерба для эффективности противоопухолевого лечения. Такова концепция биопсии СЛУ, изложенная R. Cabanas в 1977 г. Для поиска СЛУ у больных раком полового члена автор применял рентгеновскую лимфографию с использованием контраста, вводимого в лимфатический сосуд полового члена [6] .
Применительно к раку молочной железы речь идёт о сохранении подмышечных лимфатических узлов и предотвращении осложнений, связанных с подмышечной лимфаденэктомией: лимфатическим отёком верхней конечности, лимфатическим отёком молочной железы (при органосохраняющих операциях), нарушением кожной чувствительности на плече и в подмышечной области. Первоначально биопсия СЛУ применялась у больных РМЖ сT1-2N0M0, в настоящее время показания к её использованию ставятся значительно шире: она применима в тех случаях, когда по данным клинического обследования (пальпация, УЗИ ± тонкоигольная биопсия) отсутствуют признаки метастатического поражения подмышечных лимфатических узлов исходно, то есть, cN0 (не ограничиваясь T1-2); либо после эффективной предоперационной системной терапии cN1-3→ «N0» [8,9] , а также при выполнении мастэктомии по поводу протокового рака in situ [4] .
Общепринятая в настоящее время технология поиска СЛУ основана на радионуклидной маркировке лимфатических узлов с использованием радиофармпрепаратов, включающих 99mTc. Средний размер частиц радиофармпрепарата может колебаться от 3 до 400 nm [10] , однако использование частиц размером менее 100 нм позволяет более успешно находить СЛУ [2, 3] . Большинство методических вопросов отработано при исследованиях с использованием радионуклидной методики. Показано, что место введения лимфотропного препарата: перитуморальное, подкожное над опухолью, периареолярное, внутрикожное в ареолу, субареолярное не имеют значения, любой из них позволяет осуществить успешный поиск СЛУ. Мультицентричность опухоли, предшествующая эксцизионная биопсия опухоли не мешают выполнению биопсии СЛУ [10] . Адекватность технологии поиска подтверждается высокой частотой обнаружения СЛУ (>90%) и низкой частотой ложноотрицательных заключений (<10%). Частота ложноотрицательных заключений является главной характеристикой метода, она демонстрирует, с какой частотой метастатически поражённые лимфатические узлы остаются не удалёнными у пациентов, которым выполняется только биопсия СЛУ. Первое исследование диагностических возможностей поиска СЛУ в России с использованием радиофармпрепарата и красителя было успешным, частота обнаружения СЛУ составила 91,4%, ложноотрицательные ответы получены в 6,4% [1] .
Из новых технологий поиска СЛУ можно отметить появление радиофармпрепарата, содержащего молекулу таргетного действия по отношению к Т-лимфоцитам и дендритным клеткам в лимфатических узлах [99mTc-tilmanocept (Lymphoseek ® )]. Такой механизм действия и малый размер частиц (7 нм) позволяет радиофармпрепарату быстро попадать в СЛУ и надолго там задерживаться [19] . Технология с использованием наночастиц супер парамагнитного оксида железа оказалась не хуже по диагностическим возможностям, чем сочетание радиофармпрепарата с красителем [13] .
Таблица 1: частота ложноотрицательных результатов при биопсии СЛУ
| Источник n | в группах с лимфаден- эктомией | Лимфотропный препарат | Частота нахождения СЛУ в % | Частота ложно- отрицательных результатов в % |
| 1. Canavese G., et al. [7] | 115 | 99m Tc + blue dye | 99,1 | 22,9 (8/35) |
| 2. Veronesi U., et al. [20] | 257 | 99m Tc | 98,8 | 8,8 (8/91) |
| 3. Zavagno G., et al. [25] | 323 | 99m Tc | 94,9 | 16,7 (18/108) |
| 4. Krag D.N., et al. [15] | 2807 | 99m Tc + Isosulfan blue | 97,3 | 9,8 (75/766) |
| В объединённой группе 1-4. | 3502 | 99m Tc +\- | 94,9- 99,1 | 10,9 (109/1000) |
| Наши данные | 100 | Индоцианин зелёный | 98% | 3,6 (1/28) |
Заключение
Флуоресцентный метод поиска СЛУ при РМЖ имеет свои технологические особенности: в большинстве случаев СЛУ не визуализируется через кожу, его нужно искать в ране, ориентируясь на ход лимфатического протока. Выполнение метода поиска от введения препарата до получения СЛУ занимает 15-30 минут. У больных с cN0 метод по своим диагностическим характеристикам идеален, может применяться в самостоятельном варианте. Очевидным преимуществом флуоресцентного метода является отсутствие лучевой нагрузки на пациента и персонал.
Благодарность
Авторы благодарят профессоров G.C. Wishart и J.R. Benson за обучение технологии биопсии СЛУ с использованием флуоресцентной лимфографии.
Cписок авторов
С.М. Портной, А.В. Кузнецов, Н.М. Шакирова, Н.А. Козлов, А.В. Масляев, А.В. Карпов, Е.Б. Кампова-Полевая, М.Г. Мистакопуло, Ю.С. Егоров, О.А. Анурова, Т.А. Шендрикова, А.С.Горностаева, Д.В. Хайленко.
Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов.
Исследование лимфатического узла. Правила взятия и обработки лимфатического узла.
Наибольшим препятствием при постановке правильного морфологического диагноза являются недостаточно совершенные методы взятия и обработки биоптатов лимфатических узлов. При проведении биопсийного исследования всегда нужно помнить о том, что его задача состоит в своевременном и точном диагнозе, на котором основывается тактика ведения больного.
Важную роль в достижении соответствия и поддержания высоких стандартов биопсий лимфатических узлов играет «обратная связь» между морфологами и клиницистами, в том числе совместные конференции. Кроме того, необходим индивидуальный контакт, обеспечивающий возможность корректировать недостатки методик взятия биопсийного материала и его проводки.
Для биопсийного исследования, по возможности, следует отбирать наиболее патологически измененные лимфатические узлы. При этом желательно забирать узел целиком с интактной капсулой. Сегментированные же лимфатические узлы в зависимости от характера патологического процесса могут быть более затруднительны для диагностики. При значительном фиброзировании ткани биоптата или взятии его из ограниченного пространства (такого как переднее средостение) обычно наиболее выражены артефакты растяжения.
Сегодня для диагностики патологии лимфатических узлов чаще всею используются пункционные биопсии. По возможности для поверхностных, легко доступных лимфатических узлов следует использовать «открытые» биопсии; однако, в отличие от них, для пункционных биопсий характерна более низкая болезненность. Кроме того, пункционные биопсии оказываются особо ценными при исследовании абдоминальных и забрюшинных лимфатических узлов, так как не требуют выполнения лапаротомии.
В этих случаях биопсийный материал обычно забирается под контролем УЗИ или КТ. Быстрая фиксация пункционного биоптата обеспечивает хорошее сохранение морфологической структуры, что наряду с иммуногистохимическим исследованием позволяет достаточно точно идентифицировать наиболее частые лимфомы. Однако этот метод может оказаться менее успешным в идентификации пеопухолевых пролиферативных состояний.
Тонкоигольные аспирационные биопсии имеют наибольшую ценность при дифференциальной диагностике карцином и лимфом и при идентификации рецидивов заболевания или определении его стадии.
При первичном диагнозе лимфомы значение этого метода ограничено, а при отсутствии достаточного опыта работы цитопатолога не исключены многие ошибки.
Материально-техническое обеспечение многих лабораторий предопределяет поступление биоптатов лимфатических узлов в фиксированном состоянии. При этом объем фиксатора должен превышать объем биоптата минимум в 10 раз. Целые лимфатические узлы следует рассекать для обеспечения быстрого проникновения фиксатора.
В идеале, лаборатории должны получать биоптаты лимфатических узлов «свежими», сразу после эк-сцизии. С целью быстрой оценки цитоплазмы можно к тонкому срезу, взятому из одного конца узла, осторожно приложить чистое предметное стекло, высушить на воздухе и окрасить одним из быстрых методов — по Романовскому. При необходимости патологи, имеющие опыт работы с данной методикой, могут предоставить клиницистам предварительный цитологический диагноз. Однако эта методика наиболее полезна для определения способа последующей проводки биоптата в лаборатории.
Для последующего молекулярного исследования срез лимфатического узла, используемый для приготовления отпечатков, может быть заморожен. По возможности следует избегать его использования для гистологического исследования, поскольку процесс приготовления отпечатков часто вызывает в ткани артефакты растяжения.
По показаниям свежая ткань может быть использована для цитогенетического и/или проточного цитометрического анализа. При необходимости из замороженных срезов могут быть приготовлены препараты для морфологического и иммуногистохимического исследования. Для гистологического и иммуногистохимического исследования один или более срезов узла следует поместить в фиксирующий раствор на ночь (или дольше). При пункпионных биопсиях период фиксации сходный. К счастью, с диагностической целью для фиксированной ткани может быть использован широкий диапазон методов исследования, таких как иммуногистохимия. полимеразная цепная реакция (ПЦР) для определения клопальности, транслокаций и т. д.. флуоресцентная гибридизация in situ (FISH).
Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.
См. подробнее в пользовательском соглашении.
Для обеспечения соответствующих требований проводки, изготовления срезов, их окраски и иммуно-гистохимических исследований лаборатории обязательно должны постоянно проводить контроль качества своих реактивов и оборудования. Важным в гематопатологии является определение морфологической структуры клетки, а из-за плохих фиксации, проводки и изготовления срезов она достаточно легко может быть искажена и, таким образом, более трудна для понимания.
Значительное влияние на цитологические и гистологические характеристики оказывает толщина срезов; оптимальной является толщина 3—5 мкм.
Наиболее широко используемой окраской в гистопатологии и зачастую единственной в диагностике лимфатических узлов является гематоксилин и эозин (ГЭ). Окраска по Гимза дополняет другие гематопатологические характеристики и на большей части Европейского континента является окраской выбора. Она выявляет базофилию и эозинофилию, что помогает в идентификации бластных клеток, плазмоцитов, эозииофилов и тучных клеток. При использовании этой методики необходимо обращать внимание на качество окраски и учитывать рН реактивов; иначе может появиться однообразное бледно-голубое окрашивание среза с малой диагностической информативностью.
Информативным в гематопатологии является и окрашивание по методу ШИК. Оно выявляет включения внутриядерного IgM (тельца Дотчера), базальпую мембрану и основное вещество, аналогичное таковому вокруг кровеносных сосудов в ангиоиммунобластной Т-клеточной лимфоме. Окраска ретикулина может представлять ценность при определении обшей структуры лимфатического узла, выявлении фолликулярное™, структуры синусов и кровеносных сосудов.
В ряде лабораторий все описанные выше окраски используются в наборе для исследования лимфатических узлов в обязательном порядке. Однако в настоящее время наблюдается тенденция перехода непосредственно от окраски срезов гематоксилином и эозином к иммуногистохимическому исследованию, тогда как дополнительное использование одной или более окрасок могло бы иметь большую диагностическую ценность.
Опыт работы и хорошее качество гистологических препаратов позволяют диагностировать многие из простых лимфом уже на морфологическом уровне. Однако в практической деятельности в большинстве случаев трудно отнести выявлямыс изменения к какой-либо категории без помощи иммуногистохимического исследования. Даже в биопсиях, которые диагностируются с определенной уверенностью морфологически (такие как диффузная крупноклеточная лимфома), иммуногистохимические данные зачастую дают дополнительную прогностическую информацию.
Поэтому во многих лабораториях установилась практика выполнять подтверждающее иммуногистохимическое исследование при всех биопсиях лимфом. Цена этого оказывается незначительной, если сопоставить помошь в постановке точного диагноза и стоимость лечения. К сожалению, в развивающихся странах, где приобретение и хранение антител оказывается зачастую проблематичным, а цены немалыми, иммуногистохимическое исследование с диагностической целью практически не выполняется.
В практической деятельности к нам нередко поступают биопсии от патологов, поставивших приемлемый морфологический диагноз, но смущенных последующим иммуногистохимическим исследованием. Во избежание этого патологам следует знать характеристики антител и специфичность их реактивности. Лаборатория должна быть предметом постоянного контроля качества. Для большинства антител, используемых в гемопатологии, в подлежащих исследованию тканях существуют внутренние контроли (реактивные В- и Т-клегки, гистиоциты и т.д.).
Для антигенов, обычно не экспрессируемых в нормальных и реактивных тканях, таких как анапластическая крупноклеточная киназа 1 (ALK-1), необходимо исследование внешних контрольных тканей. Следует быть осторожными со срезами, которые выглядят однообразно голубыми; обычно это указывает на технические недостатки.
В последнее десятилетие иммуногистохимические методы значительно усовершенствованы в связи с промышленным изготовлением больших количеств «сильных» антител и развитием методик по антигенному восстановлению.
NK-клеточные лимфомы. Лимфома Ходжкина.
CD56 является гликопротеином мембраны и членом суперсемейства иммуноглобулинов. Первоначально он был идентифицирован в мозге и назван нейрональной клеточной молекулой адгезии (NCAM). CD56 является маркером NK- и T/NK-клеточных опухолей. Он экспрсссирустся в ряде случаев острых миелоидпых лейкозов и интенсивно—в большинстве нейроэктодермальных опухолей.
CD57 экспрессируется многими из обнаруживаемых в центрах размножения CD4 Т-клеток. CD4-позитивные С057-позитивные Т-клетки формируют розетки вокруг popcorn-клеток нодулярного типа лимфоидного преобладания лимфомы Ходжкина. Данная особенность может представлять ценность в дифференциальной диагностике этих опухолей и других типов лимфомы Ходжкина и Т-клеточной богатой гистиоцитами В-клеточной лимфомы.
CD57 экспрессируется в значительном количестве негематопоэтических опухолей.
Терминальная дезоксинуклеотидилтрансфераза (TdT)
Терминальная дезоксинуклеотидилтрансфераза является внутриядерной ДНК-полнмеразой, катализирующей присоединение остатков дезоксинуклеотидила к ДНК. Она частично ответственна за возникающее разнообразие антител или Т-клеточных рецепторов па ранних стадиях В- или Т-клеток. Следовательно, она является маркером предшественников В- или Т-клеточных лимфом. Терминальная дезоксинуклеотидилтрансфераза экспрессируется также в случаях миелоидного лейкоза при лимфобластном кризе. В нормальных тканях TdT-позитивность определяется в кортикальных лимфоцитах и в 1—2 % в лимфоцитах костного мозга (у новорожденных — 2—7 %).
Позитивность определяется окрашиванием ядер: цитоплазматическое окрашивание является артефициальным и не имеет диагностического значения.
Лимфома Ходжкина.
CD-30 является членом семейства рецепторов фактора некроза опухоли/фактора роста нервов. Экспрессия CD30 связана с активацией. Иммуногистохимически он выявляется в виде мембранного и/ или парануклеарного окрашивания. Диффузное цитоплазматическое окрашивание, часто связанное с плохой фиксацией, значения не имеет. В реактивных тканях CD30 маркирует рассеянные малые парафолликулярные бластные клетки. Интенсивное однородное окрашивание определяется в большей части анапластических крупноклеточных лимфом. Позитивными являются и большинство клеток Ходжкина/Рид-Штернберга (H/RS) в классических типах лимфомы Ходжкина. CD30 экспрессирует различное число клеток в некоторых крупноклеточных В- и Т-лимфомах.
Антитела к CD15 идентифицируют специфическую последовательность Сахаров, известную как Х-гаптен. Он экспрессируется на поздних стадиях мислоидной дифференцировки; обычно интенсивное окрашивание полиморфных форм является хорошим внутренним диагностическим критерием. Н/ RS клетки классической лимфомы Ходжкина экспрессируют CD 15 на клеточной мембране и/или в 70—80 % случаев в виде гранулярного параггуклеарного скопления. В небольшой части В- и Т-клеточных лимфом, включая анапластическую крупноклеточную лимфому, может определяться более слабое окрашивание. CD15 экспрессируют также многие эпителиальные клетки и злокачественные эпителиальные опухоли.
Исследование биопсий. С чего начать исследование биопсий.
Биопсии могут признаваться недиагносгируемыми по ряду причин: слишком малый объем биоптата, выраженные артефакты сдавления/растяжения или распространенный некроз. Ранее такие биопсии определялись как неадекватные и требующие повторного взятия материала — шаг. который не всегда клинически возможен и желателен. В настоящее время, благодаря современным методикам восстановления антигенов и достижениям иммуногистохимии, представляется возможным извлечь из таких биопсий полезную информацию и даже придти к заключительному диагнозу.
Повторное взятие материала требуется в случаях, когда диагностика процесса затруднительна, а также, если материал плохо фиксирован (плохое качество фиксатора, недостаточный его объем, медленное проникновение фиксатора в ткань из-за ее размера, неадекватное время фиксации). Можно сказать, что чаше дефекты обусловлены не ошибками при взятии биопсийного материала, а ненадлежащей его обработкой.
В таких биопсиях не только имеет место изменение цитоморфологических характеристик, но и происходит много иммуногистохимических реакций. В биопсиях, где определяются артефакты растяжения, особенно полезными являются два антитела — L26 (CD20) и Ki67. CD20 является сильным мембранным антигеном. Его часто определяют к элементам мембран крупных В-клеток в биопсиях, которые при окраске гематоксилином-эозином выглядят полностью размозженными. Аналогично можно идентифицировать В-клетки в инфарктных тканях. Ki67, ядерный антиген, как правило, выявляет четко маркирующуюся фракцию в биопсиях с артефактами растяжения/сжатия.
Эта маркирующаяся фракция полезна в распознавании медленно пролиферирующих (low-Orade) и быстро пролиферирующих (high-Grade) лимфом.
С чего начать исследование биопсий.
Достаточный опыт работы обычно позволяет гематопатологу уже при начальном гистологическом исследовании биоптата лимфатического узла отнести его к одной или нескольким возможным диагностическим категориям (реактивная, опухолевая, мелкоклеточпая, крупноклеточная, смешанная). В дальнейшем подтверждение и уточнение диагноза может быть достигнуто за счет более детальной морфологической оценки, иммуногистохимического исследования, применения молекулярных методик, генетических исследований и др.
Расточительной, часто трудной и иногда вводящей в заблуждение является попытка поставить диагноз без наличия информации о первичной биопсии, отнесенной в одну или более возможные морфологические подгруппы. Разумеется, не должно быть противоречий между данными морфологического и вспомогательных методов исследования. Для натоморфологов с недостаточным опытом в гематопатологии эта исходная категоризация биопсий может оказаться сложной и привести к неверному направлению дальнейших исследований.
Уже сделаны попытки создать алгоритм диагностики, по которому «неопытные» врачи смогут придти к правильному диагнозу. Однако широта и сложность гематопатологии затрудняют создание и использование таких алгоритмов. Далее приведены несколько признаков, которые следует искать в биоптатах лимфатических узлов для отнесения их к одной из диагностических категорий.
Читайте также: