Иммуногистохимические исследования опухоли. Иммуносорбция в диагностике опухоли.
Обновлено: 03.05.2024
Опухоли лимфоидной ткани. Иммуноморфология миеломной болезни.
Иммуноморфлогическое изучение опухолей лимфоидной ткани основано на возможности определения популяционной принадлежности опухолевых клеток, сохраняющих основные маркеры Т и В-лимфоцитов.
На поверхности В-лимфоцитов содержится большое количество иммуноглобулиновых детерминант. Поэтому В-лимфоциты можно выявить с помощью специфических антисывороток против иммуноглобулинов по методу Кунса. Используется метод мембранной флюоресценции, заключающийся в интравитальном окрашивании лимфоцитов меченой антиглобулиновой сывороткой. Этот метод исключает предварительную фиксацию, которая приводит к альтерации клеточной мембраны.
При исследовании в люминесцентном микроскопе возникающая флюоресценция имеет вид тонкого светящегося ободка вокруг темного ядра с локальным светящимся утолщением наподобие шапочки — capping phenomen. В идентификации В-лимфоцитов помогает наличие на их поверхности рецепторов к комплементу и Fc-фрагменту иммуноглобулина G. Благодаря присутствию рецепторов к комплементу В-лимфоцнты образуют розетки с эритроцитами барана, нагруженными комплексом антитело — комплемент (ЕАС-розетки).
Наличие рецепторов к Fc-фрагменту иммуноглобулинов обусловливает способность В-лимфоцитов адсорбировать на своей поверхности агрегированный глобулин. Поэтому В-лимфоциты могут быть выявлены с помощью меченых агрегатов глобулинов. Иммунофлюоресцентный метод позволяет выявить н провести дифференцированный подсчет В-клеток, несущих IgG, IgA или lgM-детерминанты. Кроме того, В-лимфоциты человека образуют спонтанные розетки с эритроцитами мыши (Е-розетки), что также используется в лабораторной диагностике лимфопролиферативных заболеваний.
Поверхностным антигеном Т-лимфоцитов, служащим его специфическим маркером, является в-антиген. Он может быть выявлен с помощью иммунофлюоресцентного метода, хотя приготовление специфической анти-Т-сыво ротки представляет известные трудности. В лабораторной диагностике для выявления Т-лимфоцитов используют метод спонтанных розеток с эритроцитами барана (Е-РОК) и реакцию бласттрансформации под влиянием ФГА (фитогемагглютинина).
Применение указанных методов при диагностике опухолей лимфоидной ткани в сочетании с гистологической оценкой преимущественной пролиферации лимфоцитов в Т- или В-зонах лимфатических узлов позволяет в ряде случаев не только уточнить природу пролиферирующих клеток, но и провести дифференциальный диагноз с реактивными пограничными пролиферативными разрастаниями лимфоидной ткани.
Установлено, что пролиферирующне опухолевые клетки при хроническом лимфолейкозе, лимфоме Беркитта, миеломе, болезни Вальденстрема обладают мембранными характеристиками В-лимфоцитов. Они образуют ЕАС-розетки, реагируют с мечеными антиглобулнновыми антителами и проявляют себя при этом как моноклональные популяции клеток Следует отметить, что некоторые случаи хронического лимфолейкоза представляют затруднения для иммуноморфологической оценки, так как опухолевые лимфоциты обнаруживают признаки Т- и В-клеток. Например, они одновременно образуют Е-рок и ЕАС-розетки, а при иммунофлюоресцентном исследовании в них выявляются одновременно в-антиген и мембранный IgM.
Особый интерес с точки зрения функционирования иммунной системы и природы опухолей лимфоидной ткани представляет иммуноморфологический анализ миеломной болезни, данные которого подтверждают клональную теорию иммунитета, выдвинутую Бериетом. Особенностью миеломы оказалась пролиферация одного клона опухолевых плазматических клеток, специализированных на синтезе определенного иммуноглобулина. По данным Osserman, на 351 наблюдение мнеломной болезни 52% составили IgG-мнеломы, 21,6% — IgA-миеломы, 0,9% — IgD-миеломы 25% миелом синтезируют легкие цепи иммуноглобулинов (белок Бене-Джонса). Известны случаи миеломы с бнклональной пролиферацией клеток, синтезирующих IgG и IgA.
Миеломы, продуцирующие IgE, представляют большую редкость. Определение вида миеломы проводится на основе иммунохимического анализа синтезируемого клетками белка и на основе иммунофлюоресцентного исследования миеломных клеток с помощью моноспецифических сывороток против отдельных глобулинов и их цепей.
В настоящее время благодаря использованию указанных методов разные клинико-морфологнческне формы лимфом и системных заболеваний с лимфоплазмоцитоидной пролиферацией получили более определенную характеристику.
Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.
См. подробнее в пользовательском соглашении.
Иммуногистохимические исследования опухоли. Иммуносорбция в диагностике опухоли.
В зависимости от цели иммуноморфологическое исследование может быть направлено на выявление опухолевых антигенов или антигенов, общих с исходной нормальной тканью. В последние годы широкое распространение получили иммуногистохимические исследования, ставящие целью обнаружение в опухолевых клетках определенных ферментов, гормонов, биогенных аминов, продуктов секреции, т. е. веществ, по которым можно составить представление о специальной функции клетки и, следовательно, высказаться о ее природе.
Определение продуктов специализированного синтеза, осуществляемого клетками опухоли, также осуществляется с помощью антисывороток к соответствующим маркерам. В последнем случае их используют в качестве гаптенов будущий маркер сначала присоединяют к несущей белковой или полипептидной молекуле, после чего путем иммунизации животного таким коиъюгнрованкым антигеном получают антисыворотку, содержащую антитела против данного маркера.
Методы иммуногистохимии широко применяются для верификации и определения функциональной активности эндокринных опухолей и опухолей APUD-системы.
В настоящее время иммуноморфологический метод нашел применение при изучении эпителиальных, соединительнотканных, миогенных и нейрогениых опухолей, т. е. опухолей любой тканевой принадлежности. Центральное место в иммуноморфологнческом изучении злокачественных новообразований занимает выяснение тканевой принадлежности опухоли и степени ее диффереицировки. Помимо теоретической значимости, знание гистогенеза и уровня дифференцированности новообразования имеет большое практическое значение для определения прогноза и выбора адекватного лечения.
Верификация гистогенеза опухоли с помощью иммуноморфологического метода является прямым продолжением насущных задач гистологической диагностики, в ряде случаев не дающей достаточных ориентиров для суждения о тканевом источнике новообразования. Особенно справедливо это для малодифференцнрованных мягкотканных опухолей, клеточно-волокнистая структура которых позволяет предполагать как соединительнотканную, так и миогенную природу опухоли. Именно поэтому успешные попытки иммуноморфологической верификации гистогенеза были впервые осуществлены в отношении мягкотканных опухолей, а именно в диагностике рабдомиосарком и гладкомышечных образований.
Дальнейшее совершествование приемов иммуносорбции и, в частности, использование перекрестной иммуносорбции позволило получить моноспецифические сыворотки против цитоплазматического и структурного миозина и использовать иммуноморфологический метод для выявления миофибробластов в десмоидах, т. е. для изучения плюрипотентности опорных клеток соединительной ткани и направленности клеточной дифференцировки.
В исследованиях, ставящих задачей теоретические аспекты онкогенеза, иммуноморфологический метод используется для определения уровня дифференцировки. Так, с помощью антисывороток против а-фетопротеина, лигандина и А-белка, служащих маркерами определенных стадий нормального развития печени крыс, показано, что низкодифференцированные трабекулярные карциномы печени крыс соответствуют ранним стадиям формирования печени, клетки высокодифференцированных карцином — гепатоцитам молодых животных с 6-го по 14-й день жизни, а умеренно дифференцированных — промежуточным стадиям нормального развития.
Эти данные указывают на определенную связь морфологической, биохимической и антигенной дифференцировки опухолевых клеток, они являются вполне объективными критериями и, по-видимому, могут быть взяты за основу при проведении аналогичных исследований по определению степени дифференцировки опухолей различного гистогенеза.
Этапность дифференцировки фибробластов, отражающаяся в гетерогенности синтезируемого ими коллагена, удачно использована для иммуноморфологнческого изучения десмондов. Применение меченых антисывороток против различных типов коллагена позволило разграничить абдоминальные и эстраабдоминальные десмоиды по типам синтезируемого коллагена и объяснить более агрессивное поведение последних относительной функциональной незрелостью пролифернрующих фибробластов, которые синтезируют преимущественно коллаген III типа. Ценность иммуноморфологического исследования очевидна, так как гистологическое строение абдоминальных и экстраабдомннальиых десмоидов идентично и не дает возможности объяснить особенности клинического течения экстраабдоминальных десмоидов (их рецидивирующий характер роста и преобладание в молодом возрасте).
В свете полученных иммуноморфологических данных, экстраабдоминальные десмоиды, по-видимому, следует рассматривать как менее дифференцированные фиброматозы.
Тканеспецифические антигены, позволяющие документировать тканевую принадлежность той или иной структуры, широко используются при изучении гистогенеза опухолей. Так, вопрос о происхождении гастроинтестинальных карциноидов из эндокринных клеток собственной пластинки слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта получил новое подтверждение на основе иммуноморфологнческого выявления в карциноидах и клетках-предшественниках, предполагаемых в качестве их гнстогенетического источника, цитокератина — тканеспецифического маркера эпителия.
Иммунопероксидазным методом цитокератин обнаружен в эндокринных клетках, локализующихся как в собственной пластинке (стромальные эндокринные клетки), так и в эпителиальном слое (эндокринные клетки эпителиальной выстилки) слизистой оболочки. Это дало основание авторам исследования рассматривать стромальную эндокринную клетку как клетку, мигрировавшую в строму из эпителиального покрова. Одновременно выявление в клетках карциноидов, стромальных и эпителиальных эндокринных клетках слизистой оболочки энолазы — специфического маркера нервной ткани указывает на нейроэктодермальную природу эндокринных клеток желудочно-кишечного тракта и, соответственно, на нейроэктодермальиое происхождение карциноидов.
В настоящее время иммуноморфологический метод нашел применение для выявления миофибробластов при дисгормональных дисплазиях, доброкачественных опухолях и раке молочной железы. Имеются попытки использовать эпидермальный кейлон — специфический эпидермальный антиген в качестве маркера плоскоклеточной дифференцировки нормального и опухолевого эпителия Мурамидаза (лизоцим) предложена в качестве надежного маркера опухолей гистиоцитарной природы. Глиальные опухоли (астроцитомы) верифицируются иммуногистохнмически выявлением глиального фибриллярного белка.
Широкие возможности иммуноморфологический метод открыл для разграничения гормонально активных и гормонально неактивных опухолей эндокринной природы. Уже этот далеко не полный перечень показывает, что опыт использования иммуноморфологнческого метода в онко-морфологии оказался плодотворным, перспективы — многообещающими, а возможности — безграничными.
Следует надеяться, что делом ближайшего будущего станет организация лабораторно-промышленного выпуска меченых специфических сывороток против различных тканевых и клеточных маркеров. В этом залог дальнейшего развития иммуиоморфологии вообще и иммуноморфологии в частности.
Лимфатические узлы при раке. Морфология лимфатических узлов при опухоли.
В эксперименте на 1-х этапах рента опухоли изменения регионарных лимфатических узлов напоминают первичный иммунный ответ, связанный с формированием гуморального иммунитета, что проявляется в образовании вторичных лимфатических фолликулов со светлыми центрами. Однако при прогрессии опухоли эти изменения не получают дальнейшего развития в виде образования плазматических клеток. Только при регрессии опухоли, индуцированной серколизином, в регионарных лимфатических узлах были отмечены изменения, характерные для активной антителопродуцирующей фазы гуморального иммунитета, образование новых фолликулов, созревание В-лимфонитов с накоплением в мозговом веществе зрелых плазматических клеток.
Морфологические данные, документирующие вторичный иммунодефицит в виде снижения иммунного ответа по гуморальному типу, на первый взгляд противоречат иммунологическим данным о преимущественной опухолевой супрессии реакций клеточного иммунитета. Это противоречие кажущееся. Во-первых, морфологическая оценка реактивных изменений лимфоидных органов строится главным образом на соотношении уровня плазматизации и количества лимфатической ткани на разных этапах ее дифференцировки в пределах Т- и В-зависимых зон. При этом соотношение Т- и В-лимфоцитов оценивается достаточно приближенно на основе их зональных топографических ориентиров.
Во-первых, при обычном гистологическом исследовании исключается определение взаимопроникновения лимфоцитов разных популяций в соседние зоны, не говоря уже о представительстве в пределах Т- и В юн субпопуляций с хелперной и супрессорной функциями. Другими словами, характеристика клеточного иммунитета на тканевом уровне ограничена методическими возможностями морфофункциональной идентификации лимфоцитов разных популяций и субпопуляций. В-третьих, явления клеточного и гуморального иммунитета настолько тесно взаимосвязаны, что снижение клеточного иммунитета трудно представить без нарушения гуморального звена.
Для правильной интерпретации морфологической картины иммунных реакций по-прежнему актуальным остается сопоставление морфологии реактивных изменений лимфоидного органа с темн или иными функциональными иммунологическими параметрами. Большие возможности заключены в иммуноморфологическом определении субпопуляций и популяций Т- и В- лимфоцитов. Однако в силу упомянутых выше методических сложностей эти возможности пока остаются прерогативой немногих высокооснащенных иммуноморфологических лабораторий мира.
Лимфоидно-плазмоцитарные инфильтраты с макрофагальной реакцией, окружающие опухоль, по современным данным, несомненно отражают местные иммунологические реакции на опухолевый рост, хотя частично местный иммунный ответ может быть отнесен и к неопухолевым антигенам. При нммунофлюоресцентном исследовании в этих инфильтратах определяют плазматические клетки, синтезирующие иммуноглобулины основных классов IgG, IgA, IgM. При этом соотношение данных иммуноглобулинов соответствует их нормальным отношениям в иммунном ответе преимущественно выявляются IgG-продуцирующие клетки, 8 меньшем количестве встречаются клетки с IgA, единичные плазмоциты обнаруживают синтез IgM.
При росте рака в слизистых оболочках в составе инфильтрата выявляют значительное количество плазматических клеток — продуцентов IgA.
Морфологический и иммуноморфологический анализ местных иммунологических реакций на опухоль представляет особый интерес в связи с попытками их оценки с точки зрения эффективности иммунного ответа к прогностического значения его в отношении проспективных потенций растущей опухоли (дальнейшего «поведения» опухоли возможности ее прогрессии или дифференцировки). В этом вопросе имеются диаметрально противоположные наблюдения.
Так, М. Ф. Глазунов (1961) отметил положительное влияние лимфоидио-плазмоцитарных инфильтратов на дифференцировку плоского эпителия на примере рогового моллюска. По данным В. В. Вит (1983), при увеальных меланобластомах наличие признаков иммунного ответа в виде лимфоплазмоцитарной и макрофагальной инфильтрации опухоли значительно ухудшает прогноз заболевания в связи с особенно активным ростом опухоли. По-видимому, эти наблюдения справедливы, однако трактовка их не может быть однозначной без иммуноморфологического анализа популяцнонного представительства лимфоцитов в инфильтрате и без учете двоякой роли гуморальных факторов в противоопухолевом иммунитете. Можно допустить, что во 2-м случае имел место феномен усиления опухолевого роста, определяемый экранирующим действием антител.
Исследования подобного рода требуют дополнительных иммунологических данных, однако они весьма перспективны, так как дают фактический материал для определения роли лимфоидной ткани в процессах клеточной пролиферации, роста и дифференцировки опухолей.
Иммуногистохимия
Иммуногистохимия, или иммуногистохимический анализ — исследование, во время которого в образцах ткани с помощью антител выявляют определенные молекулы. Этот метод диагностики нашел широкое применение в онкологии.
Немного теории и истории. Для того чтобы обнаруживать и уничтожать чужеродные вещества, иммунная система использует особые молекулы — антитела. Они отличаются специфичностью: каждое антитело может связываться строго с определенным антигеном.
В 1941 году американский иммунолог Альберт Кунс впервые решил использовать антитела в лаборатории, чтобы «распознавать» с помощью них белки бактерий. В 1984 году биохимик из Аргентины Сезар Мильштейн получил Нобелевскую премию за то, что создал гибрид опухолевой клетки с лимфоцитом, которая могла синтезировать моноклональные антитела. После этого началось производство моноклональных антител для диагностических и лечебных целей.
В 1994 г. С. Тэйлор применил иммуногистохимический анализ, чтобы проверить 20 000 опухолей, и обнаружил, что диагнозы в половине случаев были ошибочными. Иммуногистохимия зарекомендовала себя как эффективный метод диагностики.
Какие задачи в онкологии помогает решать иммуногистохимия?
Иммуногистохимический анализ помогает врачам-онкологам:
- Отнести злокачественную опухоль к тому или иному типу.
- Выяснить, в каких генах опухолевых клеток произошли мутации, какие белки способствуют прогрессированию рака.
- Выявить первичную опухоль и ее метастазы.
- Определить, произошла ли злокачественная трансформация клеток.
- Определить прогноз для пациента.
- Разобраться, поможет ли в данном случае таргетная терапия.
- Определить, чувствительны ли опухолевые клетки к химиотерапии, лучевой терапии.
Как это работает?
Иммуногистохимия бывает прямой и непрямой. В первом случае используют один вид антител, которые должны вступить в связь с определенной молекулой-мишенью. Если молекула-мишень присутствует в ткани, и реакция произошла, опухолевая ткань окрашивается:
- Чаще всего к антителу присоединяют фермент, например, пероксидазу. Этот фермент катализирует химическую реакцию, которая приводит к изменению цвета.
- Иногда к антителу присоединяют флюоресцин или родамин, при этом окрашивание выявляют с помощью флюоресцентной микроскопии.
- всего применяют непрямую иммуногистохимию. При этом используют два антитела. Одно соединяется с антигеном, второе — с полученным комплексом антиген-антитело. Маркер, который вызовет изменение цвета, связывают со вторым антителом.
Непрямой метод имеет некоторые преимущества:
- Он обладает более высокой чувствительностью, потому что с одним первичным антителом (тем, которое связывается с белком-мишенью) может связаться несколько вторичных антител.
- Исследование занимает немного времени: для того, чтобы произошла реакция, нужно примерно 3 часа.
- Непрямая иммуногистохимия требует небольшого количества антител. Например, вторичное антитело, направленное на иммуноглобулины кролика, будет реагировать на любое первичное антитело «кроличьего» происхождения. Не нужно создавать много разных видов вторичных антител с окрашивающей или флуоресцентной меткой.
Как проводят исследование?
Для того чтобы выполнить иммуногистохимический анализ, нужно получить опухолевую ткань, то есть провести биопсию. В качестве материала можно использовать столбик ткани, полученный во время трепан-биопсии, фрагмент тканей или даже целый орган, удаленный во время операции.
Образец ткани фиксируют с помощью формальдегида (иногда используют метанол, ацетон и другие фиксаторы — это зависит от того, какой антиген нужно выявить, и реагирует ли он с теми или иными фиксаторами) и погружают в парафин. Парафинизация помогает законсервировать ткань, сохранить ее структуру на длительное время.
Затем ткань, помещенную в парафин, нарезают с помощью специального инструмента — микротома — на слои толщиной 3–5 мкм. Эти тонкие срезы помещают на стекло, покрытое, специальным клеем.
Некоторые образцы слишком чувствительны к реагентам, которые применяют во время вышеописанной процедуры. Их нельзя помещать в парафин. Такие ткани замораживают жидким азотом. Этим альтернативным методом пользуются редко, только в случае необходимости, так как у заморозки есть некоторые недостатки: она делает изображение под микроскопом не таким четким, требует специальных условий хранения образцов. Фиксацию ткани в таких случаях проводят уже после нанесения на стекло и размораживания, ацетоном или формальдегидом.
После того как срезы нанесены на стекло, из них нужно удалить весь парафин, иначе антитела не прореагируют с антигеном. Эта процедура называется депарафинизацией. Ее проводят с помощью ксилола. Затем выполняют еще некоторые подготовительные процедуры, чтобы антитела могли успешно прореагировать с нужными антигенами, и, наконец, проводят непосредственно иммуногистохимический анализ. Обработанную антителами ткань рассматривают под микроскопом, чтобы проверить, окрасилась ли она.
Какие молекулы-мишени выявляют во время иммуногистохимии?
Количество возможных мишеней измеряется сотнями. Перед исследованием врач должен понимать, что он ищет, и использовать соответствующие антитела. В онкологии мишенями являются опухолевые маркеры — вещества, которые в здоровых клетках отсутствуют вообще или присутствуют в значительно меньшем количестве. Вот некоторые примеры:
- Рецепторы к эстрогенам и прогестерону помогают идентифицировать гормонально-позитивный рак молочной железы и разобраться, помогут ли женщине гормональные препараты.
- Простатспецифический антиген (ПСА) имеет значение в диагностике рака простаты.
- Альфа-фетопротеин — присутствует в гепатоцеллюлярной карциноме (рак печени).
- Цитокератины помогают в диагностике рака и некоторых сарком (злокачественных опухолей соединительной ткани).
- Фермент CD10 (CALLA) связан с карциномой почек, лимфобластным лейкозом.
Какова роль иммуногистохимии в современной онкологии?
Иммуногистохимический анализ помогает изучить характеристики злокачественной опухоли, которые не могут выявить другие методы диагностики. Зачастую это играет важную роль в уточнении диагноза и назначении правильного лечения. Врач может определить, какие комбинации препаратов будут наиболее эффективны для конкретного больного, иными словами, реализуется принцип персонализированного лечения. Зачастую это помогает улучшить результаты, подобрать эффективное лечение для пациентов, которым не помогает стандартная терапия.
Иммуногистохимия (ИГХ) – это анализ, который направлен на выявление специфических веществ. Существует несколько разновидностей метода (непрямая и прямая иммуногистохимия), однако все они характеризуются одним и тем же механизмом – связыванием антител с антигенами. ИГХ активно применяется в онкологии, однако метод информативен только в том случае, если дополняется другими видами исследований.
Польза для онкологии
Диагностическая ценность иммуногистохимии заключается том, что ИГХ позволяет:
- понять, произошла ли злокачественная трансформация клеток,
- определить тип опухоли,
- разработать схему лекарственной терапии,
- оценить прогноз,
- выявить опухоль и ее метастазы.
В совокупности с другими методиками иммуногистохимия играет важное значение не только в диагностике, но и в составлении плана лечения.
Как проводят иммуногистохимический анализ
Для проведения ИГХ требуется образец биологического материала. Его чаще всего получают путем биопсии. На первом этапе ИГХ проводится стандартное гистологическое исследование, во время которого специалист получает базовую информацию, решает, должна ли проводиться иммуногистохимия, определяет, какие антитела необходимо назначить.
ИГХ можно проводить с помощью автоматических приборов и в ручном режиме. Вкратце описать весь процесс ИГХ можно следующим образом:
- Из парафиновых блоков готовят срезы, которые помещают на предметное стекло.
- После пробоподготовки на срезы наносят антитела и инкубируют некоторое время (согласно инструкции).
- На следующем этапе наносится система визуализации.
- При необходимости срезы дополнительно окрашиваются гематоксилин-эозином.
- На завершающем этапе стекла изучает врач-патоморфолог с помощью микроскопа.
Информация, которую помогает получить иммуногистохимия, будет разной для каждого вида рака. Например, при злокачественных опухолях молочной железы оценивают уровень экспрессии рецепторов, в результате чего определяют чувствительность опухоли к некоторым лекарственным препаратам. Если у пациента есть подозрение на лимфому, ИГХ поможет провести дифференциальную диагностику между ее различными видами, что крайне важно для определения тактики лечения.
Специалисты «Евроонко» Санкт-Петербург выполняют иммуногистохимические исследования на современном оборудовании. Весь процесс ИГХ четко отлажен, за счет чего результаты готовятся в кратчайшие сроки – 3-7 дней. После выдачи результатов ИГХ опытный онколог проконсультирует о дальнейших вариантах лечения в Санкт-Петербурге.
Цены на иммуногистохимические
исследования в Санкт-Петербурге
| Наименование услуги | Цена |
| Консультация врача-онколога, первичная | 5 100 руб. |
| Иммуногистохимическое исследование экспрессии СОХ-2 | 4 700 руб. |
| Определение пролиферативной активности маркеров р16, p53, Bcl2, Ki67, за каждый маркер | 4 700 руб. |
| Иммуногистохимическое исследование Melan A | 6 400 руб. |
| Определение белка к рецепторам HER 2/neu | 6 400 руб. |
| Определение экспрессии белка E-cadherin | 4 700 руб. |
| Иммуногистохимическое исследование маркеров рецептивности эстрогенов, прогестерона или андрогенов (один маркер) | 6 400 руб. |
Специальные предложения
Лечение пациентов проводится в соответствии со стандартами и рекомендациями наиболее авторитетных онкологических сообществ. «Евроонко» является партнёром Фонда борьбы с раком. ВНИМАНИЮ ПАЦИЕНТОВ: Рекомендации по лечению даются только после консультации у специалиста. Ваши персональные данные обрабатываются на сайте в целях его корректного функционирования. Если вы не согласны с обработкой ваших персональных данных, просим вас покинуть сайт. Оставаясь на сайте, вы даёте согласие на обработку ваших персональных данных.
Сведения и материалы, размещенные на сайте , подготовлены исключительно в информационных целях и не являются медицинской консультацией или заключением. Авторы информационных материалов сайта не могут гарантировать применимость такой информации для целей третьих лиц и не несут ответственности за решения третьих лиц и связанные с ними возможные прямые или косвенные потери и/или ущерб, возникшие в результате использования информации или какой-либо ее части, содержащейся на сайте.
Читайте также: